Реакция райта

Лабораторная диагностика бруцеллеза

Один из методов лабораторной диагностики — выделение культуры возбудителя от больных с острым бруцеллезом. Для посева используется кровь, реже моча, желчь, костный мозг. Материал засевается на мясо-пептонный агар и мясопептонный бульон с добавлением 1% глюкозы и 2% химически чистого глицерина, а также питательный бульон и агар Д.

Для возбудителей бруцеллеза при выделении их от больных характерен крайне медленный рост на питательных средах. Посев выдерживают при 37°С в течение 30 дней, а в случае выделения В. abortus необходимо присутствие в воздухе повышенного содержания углекислого газа. Бактериологическое исследование длится от 20 до 30 дней.

Выделенные культуры идентифицируются на основании морфологических и культуральных признаков, в реакции агглютинации и фаголизиса.

Иммунологическая диагностика бруцеллеза у человека является ведущей, поскольку бактериологические исследования практически не применяются.

Широкое распространение получили серологические реакции агглютинации, связывания комплемента, непрямой гемагглютинации, опсонофагоцитарная проба, аллергическая проба и, за последнее время, иммунофлуоресцентный анализ.

Реакция агглютинации бруцелл сывороткой больного или переболевшего (и привитого) осуществляется в пробирочном варианте (реакция Райта) и в ускоренном, за 8 минут, на оконном стекле (реакция Хеддльсона).

Первая производится в лабораторных условиях, вторая, как правило, — при массовых полевых обследованиях и не исключает в последующем постановки реакции Райта.
Для обеих реакций применяется стандартный единый бруцеллезный диагностикум.

При постановке реакции Райта положительные результаты учитываются при титре 1:200 и выше, при постановке реакции Хеддльсона положительной считают агглютинацию во второй или третьей дозе (0,02— 0,01 мл сыворотки); агглютинация на 4 креста во всех дозах сыворотки (от 0,04 до 0,01 мл) — результат резко положительный.

Разведения сыворотки в реакции Хеддльсона не сопоставляют с титрами реакции Райта, первая играет в основном роль качественной реакции, о высоте титров агглютининов судят по результатам пробирочной реакции.

Наиболее высокие титры реакции агглютинации наблюдаются обычно через 1—2 месяца от начала заболевания (у 80% обследованных больных), затем они начинают падать. Реакция Райта может сохраняться положительной в течение 3—7 лет после перенесенного заболевания, если данное лицо продолжает находиться в условиях возможной реинфекции. В случае отрицательного или сомнительного результатов реакцию следует повторить через 7—10 дней.

Реакция связывания комплемента при бруцеллезе специфична и более чувствительна, чем реакция агглютинации. Она широко применяется ветеринарными специалистами при обследовании сельскохозяйственных животных. Для повышения чувствительности РСК используют ее модификацию — связывание комплемента при 4°С в течение 18 часов. У людей эту реакцию можно применять с 20-го по 25-й день болезни.

Для выявления неполных (блокирующих) антител при бруцеллезе проводят реакцию Кумбса. На выполнение реакции требуется 18—20 часов. Неполные антитела, в отличие от агглютининов — полных антител, появляются в крови больного раньше и сохраняются дольше, что делает эту реакцию пригодной для целей ранней и ретроспективной диагностики.

За последние годы для определения агглютининов успешно используется реакция непрямой гемагглютинации. В качестве диагностикума служат эритроциты барана или человека О-группы, сенсибилизированные полисахаридным антигеном бруцелл.

Кожно-аллергическая проба при бруцеллезе становится, как правило, положительной на 3-й неделе заболевания, у привитых она нарастает значительно медленнее и достигает 72—90% к 6 месяцам после иммунизации, сохраняясь до 1 года. У больных реакция Бюрне сохраняется много лет после перенесенного бруцеллеза. На практике для текущей или ретроспективной диагностики бруцеллеза у человека или определения иммунологической эффективности прививок, следует проводить комплекс серо-аллергических исследований, которые взаимно дополняют друг друга.

Молоко больных коров, коз и овец может содержать агглютинины к бруцеллезному антигену. Для их выявления обезжиренное свежее молоко или молочная сыворотка исследуются по реакции Хеддльсона с единым бруцеллезным диагностикумом. Для этой же цели, но с цельным молоком, применяется так называемая кольцевая реакция (КР), сущность которой заключается в том, что применяют специальный окрашенный бруцеллезный антиген.

При наличии в молоке специфических агглютининов они соединяются с антигеном, образуя в верхней части пробирки (где скапливаются сливки) окрашенное кольцо, остальная часть молока остается неокрашенной. КР в настоящее время приобретает все большее значение как полевая ориентировочная серологическая проба на бруцеллез и представляет интерес как для медицинских, так и для ветеринарных работников.

В настоящее время при помощи флуоресцирующих бруцеллезных антител можно выявить бруцеллы из разнообразных субстратов — воды, крупяных продуктов, молока, брынзы, абортированных плодов, а также непрямым методом можно выявить антитела в сыворотке .крови больных, переболевших или привитых. В последнем случае положительным следует считать свечение бруцелл на 2—3 креста при разведении сыворотки 1:10—1:20. По некоторым данным, в реакции иммунофлуоресценции можно обнаружить специфические антитела в 2,5 раза чаще, чем в реакции Райта.

Опсонофагоцитарная реакция (ОФР) основана на способности сегментоядерных нейтрофилов фагоцитировать бруцеллы благодаря наличию в крови больного специфических опсонинов, нарастающих в процессе инфекции или иммунизации. Реакцию ставят с нейтрофилами крови больного или привитого со специальным антигеном (взвесь убитых бруцелл в физиологическом растворе без консерванта).

На проведение реакции уходит 1 час. Подсчитывают количество фагоцитированных бруцелл в 25 лейкоцитах. Если общее количество этих бруцелл более 25, реакцию считают ясно положительной, от 50 до 75 бруцелл — резко положительной. У здоровых людей показатель ОФР не превышает 5.

Некоторые данные свидетельствуют о высокой результативности ОФР. У больных она бывает положительной в 95,4% случаев, у переболевших—в 100%, у работников боен — в 57%, у ветработников — в 72%, у контактировавших с животными — в 5%. ОФР имеет также и прогностическое значение, показатели ее увеличиваются к периоду выздоровления или при хорошо компенсированном инфекционном процессе. ОФР при бруцеллезе воспроизводится не менее длительно, чем реакция Райта.

Широко применяется кожно-аллергическая проба с бруцеллином (реакция Бюрне), которая дает положительные результаты у больных, переболевших и привитых. Постановку и учет пробы проводят как обычно. Средний размер кожной реакции (гиперемии и инфильтрата), отмечаемой через 24 часа, — 4×6 см. Диагностическое значение имеет инфильтрат не менее 2×3 см через 24 часа.

— Читать «Профилактика бруцеллеза и противоэпидемические меры»

Оглавление темы «Бруцеллез. Сибирская язва»:

  1. Профилактика сальмонеллеза и противоэпидемические меры
  2. Бруцеллез — история, география, возбудители
  3. Источник бруцеллеза и его резервуар
  4. Клиника бруцеллеза у животных и человека
  5. Лабораторная диагностика бруцеллеза
  6. Профилактика бруцеллеза и противоэпидемические меры
  7. Сибирская язва — история, география, возбудители
  8. Источник сибирской язвы и ее резервуар
  9. Клиника сибирской язвы у животных и человека
  10. Лабораторная диагностика сибирской язвы

2. Методика постановки реакции агглютинации (реакции райта) на бруцеллёз сельскохозяйственных животных

  • •Предисловие
  • •I. Краткие сведения об инфекции и иммунитете
  • •II. Бактерийные препараты и химиотерапевтиче- ские средства, применяемые в ветеринарной практике
  • •Вакцины
  • •Вакцины, изготовленные из ослабленных живых (матриксов) культур
  • •Вакцины, изготовленные из культур, убитых формалином
  • •Вирусы. Используемые для вакцинации
  • •Иммунные сыворотки, применяемые для серотерапии и серопрофилактики
  • •Средства, применяемые для диагностической цели
  • •Препараты, применяемые для диагностических реакций на животных
  • •Препараты, применяемые для лабораторных диагностических реакций
  • •Химиотерапевтические препараты
  • •III. Хранение и транспортировка прививочных средств
  • •IV.Инструментарий, применяемый при прививках
  • •V. Организация и техника проведения прививок организация прививок
  • •Фиксация животных
  • •Подготовка препаратов и инструментария
  • •Способ введения препаратов
  • •VI. Предохранительные, лечебные и вынужденные прививки
  • •1. Прививки против сибирской язвы
  • •Предохранительные прививки
  • •Вынужденные прививки
  • •Комбинационные прививки
  • •Пассивные прививки
  • •Возможные осложнения при прнпивках
  • •Учёт результатов прививок
  • •Производство прививок против сибирской язвы северным оленям
  • •2. Прививки против эмфизематозного (шумящего) карбункула
  • •3. Прививки против паратифа и колибациллеза телят
  • •4. Прививки против рожи свиней
  • •Способ применения
  • •Возможные осложнения после прививки
  • •Учет результатов
  • •5. Прививки против паратифа поросят
  • •6. Прививки против дизентерии ягнят
  • •7. Прививки против столбняка
  • •8. Прививки против геморрагической септицемии сельскохозяйственных животных и холеры птиц
  • •9. Прививки при мыте лошадей
  • •10. Прививки против чумы свиней
  • •11. Прививки против оспы овец
  • •12. Прививки против чумы крупного рогатого скота
  • •13. Прививка против бешенства
  • •14. Прививки крупного рогатого скота против перипневмонии
  • •15. Прививки против оспы-дифтерита птиц
  • •VII. Аллергические реакции у животных
  • •1. Диагностика туберкулёза у крупного рогатого скота. Свиней и птиц
  • •Внутрикожная нроба у крупного рогатого скота
  • •Внутрикожная туберкулинизация у свиней
  • •Глазная туберкулинизация
  • •Подкожная туберкулинизация
  • •Диагностика туберкулёза птиц с помощью туберкулина
  • •2. Диагностика сапа у однокопытных животных с помощью маллеина
  • •Глазная маллеинизация
  • •Подкожная маллеинизация
  • •3. Диагностика бруцеллёза у овец и коз с помощью бруцеллизата
  • •4. Диагностика бруцеллёза у крупного рогатого скота с помощью абортина
  • •VIII. Серологические методы лабораторной диагностики
  • •1. Методика постановки реакции преципитации на сибирскую язву
  • •2. Методика постановки реакции агглютинации (реакции райта) на бруцеллёз сельскохозяйственных животных
  • •8. Методика постановки реакции агглютинации при инфекционном аборте лошадей
  • •4. Методика постановки реакции агглютинации со свежей каплей крови при диагностике бациллоносителей белого поноса у кур
  • •5. Методика постановки реакции связывания комплемента при бруцеллезе
  • •Компоненты реакции
  • •Титрация компонентов реакции
  • •Титрация гемолизина
  • •Титрация комплемента в гемолитической системе
  • •Титрация комплемента в бактериологической системе
  • •Титрация бруцеллёзного антигена
  • •Примерный результат реакции
  • •Главный опыт
  • •Оценка результатов реакции
  • •6. Методика постановки реакции связывания комплемента при сапе
  • •Компоненты реакции
  • •Титрация компонентов реакции
  • •Титра ция гемолизина
  • •Титрация комплемента в гемолитической системе
  • •Титрация комплемента в бактериологической системе
  • •Разведение комплемента для главного опыта
  • •Главный опыт
  • •Титрация сапного антигена
  • •7. Методика постановки рск при перипневмонии крупного рогатого скота
  • •Титрация компонентов реакции
  • •Титрация комплемента в гемолитической системе
  • •Титрация комплемента в бактериологической системе
  • •Разведение комплемента для главного опыта
  • •Титрация антигена
  • •Главный опыт
  • •Учёт реакции
  • •8. Методика постановки реакции связывания комплемента при случной болезни
  • •Титрация компонентов реакции
  • •Титрация гемолизина
  • •Титрация комплемента в гемолигической системе
  • •Подтитровка комплемента на сыворотках
  • •Разведение комплемента в установленном титре
  • •Главный опыт
  • •Титрация трипанозомного антигена
  • •IX. Применение химиотерапевтических препаратов
  • •1.Применение наганина
  • •Техника приготовления раствора наганина
  • •Техника введения раствора
  • •Применение наганина с профилактической целью
  • •Применение наганина с лечебной целью
  • •Терапия осложнений после лечения
  • •2. Применение новарсенола
  • •3. Применение, флавакридина (трипафлавина, акрифлавина. Эифлавина)
  • •Способ применения и возможные осложнения
  • •4. Применение трипанблау (трипансинь)
  • •Признаки побочного действия трипанблау
  • •Профилактическое применение трипанблау
  • •Лечебное применение трипанблау
  • •Техника приготовления растворов
  • •5. Применение альбаргина
  • •6. Применение новоплазмина (лп4)
  • •7. Применение сульфантрола (сульфамид — с55)
  • •8. Применение пироплазмина (акаприн)

Реакции агглютинации

Реакция агглютинации— РА(от лат. aggluti-natio — склеивание) — простая по постановке реакция, при которой происходит связыва­ние антителами корпускулярных антигенов (бактерий, эритроцитов или других клеток, нерастворимых частиц с адсорбированными на них антигенами, а также макромолекуляр-ных агрегатов). Она протекает при наличии электролитов, например при добавлении изо­тонического раствора натрия хлорида.

Применяются различные варианты реакции агглютинации: развернутая, ориентировоч­ная, непрямая и др. Реакция агглютинации проявляется образованием хлопьев или осад­ка (клетки, «склеенные» антителами, име-

ющими два или более антигенсвязывающих центра — рис. 13.1). РА используют для:

1) определения антител в сыворотке крови боль­
ных, например, при бруцеллезе (реакции Райта,
Хеддельсона), брюшном тифе и паратифах (реак­
ция Видаля) и других инфекционных болезнях;

2) определения возбудителя, выделенного от больного;

3) определения групп крови с использова­нием моноклональных антител против алло-антигенов эритроцитов.

Для определения у больного антител ставят развернутую реакцию агглютинации: к разве­дениям сыворотки крови больного добавля­ют диагностикум (взвесь убитых микробов,) и через несколько часов инкубации при 37 °С отмечают наибольшее разведение сыворотки (титр сыворотки), при котором произошла агглютинация, т. е. образовался осадок.

Характер и скорость агглютинации зави­сят от вида антигена и антител. Примером являются особенности взаимодействия диа-гностикумов (О- и //-антигенов) со специ­фическими антителами. Реакция агглютина­ции с О-диагностикумом (бактерии, убитые нагреванием, сохранившие термостабильный О-антиген) происходит в виде мелкозернис­той агглютинации. Реакция агглютинации с Н-диагностикумом (бактерии, убитые фор­малином, сохранившие термолабильный жгу­тиковый Н-антиген) — крупнохлопчатая и протекает быстрее.

Если необходимо определить возбудитель, выделенный от больного, ставят ориентиро­вочную реакцию агглютинации, применяя диа­гностические антитела (агглютинирующую сыворотку), т. е. проводят серотипирование возбудителя. Ориентировочную реакцию проводят на предметном стекле. К капле диа­гностической агглютинирующей сыворотки в разведении 1:10 или 1:20 добавляют чистую культуру возбудителя, выделенного от больно­го. Рядом ставят контроль: вместо сыворотки наносят каплю раствора натрия хлорида. При появлении в капле с сывороткой и микроба­ми хлопьевидного осадка ставят развернутую реакцию агглютинации в пробирках с увели­чивающимися разведениями агглютинирую­щей сыворотки, к которым добавляют по 2-3 капли взвеси возбудителя. Агглютинацию учитывают по количеству осадка истепени просветления жидкости. Реакцию считают положительной, если агглютинация отмеча­ется в разведении, близком к титру диагнос­тической сыворотки. Одновременно учитыва­ют контроли: сыворотка, разведенная изото­ническим раствором натрия хлорида, должна быть прозрачной, взвесь микробов в том же растворе — равномерно мутной, без осадка.

Разные родственные бактерии могут агглю­тинироваться одной и той же диагностической агглютинирующей сывороткой, что затрудня­ет их идентификацию. Поэтому пользуются адсорбированными агглютинирующими сыво­ротками, из которых удалены перекрестно

реагирующие антитела путем адсорбции их родственными бактериями. В таких сыво­ротках сохраняются антитела, специфичные только к данной бактерии. Получение таким способом монорецепторных диагностических агглютинирующих сывороток было предло­жено А. Кастелляни (1902).

Реакция непрямой (пассивной) гемагглюти-нации (РНГА, РПГА)основана на использова­нии эритроцитов (или латекса) с адсорбиро­ванными на их поверхности антигенами или антителами, взаимодействие которых с соот­ветствующими антителами или антигенами сыворотки крови больных вызывает склеива­ние и выпадение эритроцитов на дно пробирки или ячейки в виде фестончатого осадка (рис. 13.2). При отрицательной реакции эритроци­ты оседают в виде «пуговки». Обычно в РНГА выявляют антитела с помощью антигенно­го эритроцитарного диагностикума, который представляет собой эритроциты с адсорбиро­ванными на них антигенами. Иногда приме­няют антительные эритроцитарные диагнос-тикумы, на которых адсорбированы антитела. Например, можно обнаружить ботулиничес-кий токсин, добавляя к нему эритроцитарный антительный ботулинический диагностикум (такую реакцию называют реакцией обратной непрямой гемагглютинации — РОНГА). РНГАприменяют для диагностики инфекционных болезней, определения гонадотропного гор­мона в моче при установлении беременности, для выявления повышенной чувствительнос­ти к лекарственным препаратам, гормонам и в некоторых других случаях.

Реакция коагглютинации. Клетки возбуди­теля определяют с помощью стафилококков, предварительно обработанных иммунной диагностической сывороткой. Стафилококки, содержащие белок А, имеющий сродство кFc-фрагменту иммуноглобулинов, неспеци­фически адсорбируют антимикробные анти­тела, которые затем взаимодействуют актив­ными центрами с соответствующими микро­бами, выделенными от больных. В результате коагглютинации образуются хлопья, состо­ящие из стафилококков, антител диагности­ческой сыворотки и определяемого микроба.

Реакция торможения гемагглютинации (РТГА)основана на блокаде, подавлении ан­тигенов вирусов антителами иммунной сы­воротки, в результате чего вирусы теряют свойство агглютинировать эритроциты (рис. 13.3). РТГА применяют для диагностики мно­гих вирусных болезней, возбудители которых (вирусы гриппа, кори, краснухи, клещево­го энцефалита и др.) могут агглютинировать эритроциты различных животных.

Реакцию агглютинации для определения групп крови применяют для установления системы АВО (см. разд. 10.1.4.1) с помощью агглютина­ции эритроцитов антителами иммунной сы­воротки против антигенов групп крови А (II), В (III).Контролем служат: сыворотка, не содер­жащая антител, т. е. сыворотка АВ (TV) группы крови; антигены, содержащиеся в эритроцитах групп А (II), В (III). Отрицательный контроль не содержит антигенов, т. е. используют эрит­роциты группы 0 (I).

В реакции агглютинации для определения резус-фактора (см. разд. 10.1.4.1) используют антирезусные сыворотки (не менее двух раз­личных серий). При наличии на мембране ис­следуемых эритроцитов резус-антигена проис­ходит агглютинация этих клеток. Контролем служат стандартные резус-положительные ирезус-отрицательные эритроциты всех групп крови.

Реакцию агглютинации для определения антирезусных антител (непрямую реакцию Кумбса) применяют у больных при внутрисо-судистом гемолизе. У некоторых таких боль­ных обнаруживают антирезусные антитела, которые являются неполными, одновалент­ными. Они специфически взаимодействуют с

резус-положительными эритроцитами, но не вызывают их агглютинации. Наличие таких неполных антител определяют в непрямой реакции Кумбса. Для этого в систему анти-резусные антитела + резус-положительные эритроциты добавляют антиглобулиновую сыворотку (антитела против иммуноглобули­нов человека), что вызывает агглютинацию эритроцитов (рис. 13.4). С помощью реакции Кумбса диагностируют патологические состо­яния, связанные с внутрисосудистым лизисом эритроцитов иммунного генеза, например ге­молитическую болезнь новорожденных: эрит­роциты резус-положительного плода соединя­ются с циркулирующими в крови неполными антителами к резус-фактору, которые пере­шли через плаценту от резус-отрицательной матери.

Дата добавления: 2016-02-04; просмотров: 1356;

МЕТАБОЛИЗМ БИЛИРУБИНА

Клинический подход к пациенту с желтухой должен базироваться на понимании метаболизма билирубина (рис. 14-2, 14-3).

Первый этап метаболизма билирубина заключён в распаде эритроцитов в ретикулоэндо- телиальной системе с выделением гема и образованием неконъюгированного (непрямого) билирубина.

Он относительно малорастворим и его обнаружение в сыворотке требует добавления спирта в качестве растворителя перед проведением реакции с диазореактивом в реакции Ванденберга. Добавление спирта — основа непрямой реакции Ванденберга. В норме билирубин в крови пребывает почти исключительно в этой форме. Любое усиление гемолиза может вызывать желтуху, но так как неконъюгированный билирубин плохо растворим в воде, он не появляется в моче, и поэтому гемолитическую желтуху также называют ахолурической. С другой стороны, конъюгированный билирубин растворим в воде и, следовательно, способен реагировать напрямую с реактивом в реакции Ванденберга и попадать в мочу. Ги- пербилирубинемию с повышением конъюгированного билирубина наблюдают при всех видах обструктивной желтухи.

Неконъюгированный билирубин в крови пребывает в связанном с белками виде, преимущественно с альбумином. При вытеснении его из связи с белком он, обладая аффинитетом к липидам, может проникать в головной мозг у новорождённых, но у взрослых он не проходит через гематоэнцефалический барьер. Некоторые препараты, например, сульфонамиды и салицилаты, способны воздействовать на связь билирубина с белком. У новорождённых при развитии физиологической желтухи, вызванной незрелостью конъюгирующих ферментов печени, назначение таких лекарственных средств иногда усиливает тяжесть желтухи и может спровоцировать развитие ядерной желтухи.

На следующем этапе билирубин захватывается печёночными клетками и переносится в эндоплазматический ретикулум, где находится фермент глюкуронил трансфераза. Здесь происходит конъюгация билирубина с глюкуро- нидом с образованием конъюгированного водорастворимого (прямого) билирубина. Нарушения на этих этапах обусловливают развитие врождённых гипербилирубинемий, из которых чаще всего встречают болезнь Жильбера. Данная патология наследуется по аутосомно-до- минантному типу. Преимущественно нарушен захват неконъюгированного билирубина печёночными клетками, но в некоторых случаях
возможен и дефект собственно конъюгиро- вания. В этом случае производство фермента глюкуронил трансферазы может быть индуцировано фенобарбиталом. Мужской папоротник, использовавшийся для лечения глистной инвазии, влияет на транспортировку билирубина в эндоплазматический ретикулум, а новобиоцин® воздействует на конъюгирование, что также приводит к развитию желтухи.

Конъюгированный билирубин затем накапливается в гепатоцитах и экскретируется в канальцы и далее переносится в более крупные ветви билиарного дерева.

Наследственный дефект экскреции по типу гипербилирубинемии болезнь Дубина—Джонсона характеризует коричнево-чёрное окрашивание печени, возмож
но, за счёт меланина. Контраст, применяемый для холецистографии, конкурирует с конъюгированным билирубином и поэтому при наличии его избытка он не концентрируется и даже может усиливать желтуху. Метилтестостероновая желтуха (а также желтуха, вызванная другими препаратами С17-алкилированного тестостерона для приёма внутрь) возникает из-за нарушения канальцевой экскреции билирубина. Данный феномен зависит от дозы, в отличие от внутрипечёночного холестаза по механизму гиперчувствительности, наблюдаемого у некоторых больных, принимающих фенотиазины.

Практически весь конъюгированный билирубин экскретируется в ЖКТ, где превращается в стеркобилиноген, а затем в стеркобилин. Не-

которая часть стеркобилиногена всасывается из кишечника и снова экскретируется с жёлчью. Определённая доля экскретируется с мочой в виде уробилиногена мочи. При неспособности печёночных клеток повторно экскретировать стеркобилиноген возникает избыток уробилиногена мочи, что является простым, но очень чувствительным методом для оценки функции печени. Это также имеет существенное значение для проведения дифференциальной диагностики при желтухе. Наличие полной обструкции любой этиологии предполагает исчезновение уробилиногена из мочи, так как жёлчь не попадает в кишечник. При вирусном гепатите возможно повышение концентрации уробилиногена на ранней стадии за счёт повреждения печёночных клеток. В фазу внутрипечёночного холестаза при вирусном гепатите уробилиноген отсутствует и появляется в моче вновь только при стихании холестаза. Обструктивную желту
ху характеризует осветление кала из-за исчезновения жёлчных пигментов, в то время как при гемолитической желтухе кал может быть темнее, чем обычно, из-за избытка образования стеркобилиногена. Стойкая полная обструкция с длительным отсутствием уробилиногена в моче свидетельствует о наличии рака головки поджелудочной железы, так как при камне в общем жёлчном протоке, как правило, всё же небольшое количество жёлчи проходит в кишечник. Ежедневная оценка внешнего вида кала и мочи, таким образом, простой метод обследования, но важный и для диагностики, и для прогноза.

Добавить комментарий

Ваш e-mail не будет опубликован. Обязательные поля помечены *