Срок использования моющего раствора с биолотом

Предстерилизационная очистка

Предстерилизационная очистка — это комплекс мероприятий, направленных на удаление белковых, жировых, механических загрязнений и остаточных количеств лекарственных препаратов. В настоящее время наиболее перспективными являются группы дезинфектантов, позволяющие совместить дезинфекцию и предстерилизационную очистку.
Все новые инструменты, еще не применявшиеся для работы с пациентами, должны пройти предстерилизационную очистку с целью удаления промышленной смазки и механических загрязнений.
Предстерилизационная очистка осуществляется как ручным, так и механизированным способом (с применением моечных машин, установок).
Методика проведения механизированной очистки должна проводиться в соответствии с инструкцией по эксплуатации, прилагаемой к моечному оборудованию. Оба способа требуют применения разрешенных моечных средств, которые должны быть эффективными, нетоксичными, не портить обрабатываемое изделие, обладать высокомоющей и эмульгирующей активностью.
Контроль качества предстерилизационной очистки проводится 1 раз в неделю, контролю подвергается 1% от одновременно обработанных изделий одного наименования (но не менее 3-5 единиц). Качество предстерилизационной обработки инструментов проверяют путем постановки проб (азопирамовой, фенолфталеиновой, амидопириновой). Азопирамовая проба является универсальной.
Азопирамовая проба
Приготовление рабочего раствора:
Сухие компоненты— порошок «А» (большая упаковка) и порошок «СА» (маленькая упаковка) смешивают в сухой посуде.
Смесь заливают 95% этиловым спиртом до объема 100 мл и тщательно размешивают стеклянной палочкой до полного растворения ингредиентов.
Готовый раствор может храниться в плотно закрытом флаконе в темноте при +4°С (в холодильнике) 2 месяца, в темноте при комнатной температуре — не более 1 месяца. Умеренное пожелтение реактива в процессе хранения без выпадения осадка не снижает его рабочих свойств. При наличии стабилизатора раствор хранится в 2 раза дольше нестабилизированного.
Методика постановки пробы. Рабочим раствором протереть различные поверхности инструмента или нанести 2-3 капли азопирама пипеткой. При наличии следов крови немедленно или через 1,5 мин появится фиолетово-синее окрашивание, быстро переходящее в сиренево-пурпурное или буроватое. При наличии ржавчины или кислоты окрашивание буроватое.
Пригодность рабочего раствора азопирама проверяют в случае необходимости так: 2-3 капли наносят на кровяное пятно. Если не позже, чем через минуту появляется фиолетовое окрашивание, переходящее затем в сиреневое, реактив годен к употреблению. Если окрашивание в течение 1 мин не появляется, реактивом пользоваться нельзя.
«Практическое руководство по хирургической стоматологии»
А.В. Вязьмитина

Этапы предстерилизационной очистки

1. Замачивание изделий в моющем растворе на время определенное инструкцией к каждому конкретному раствору или кипячение в растворе (или использование механизированного метода с применением ультразвука);

2. Мойка каждого изделия в моющем растворе при помощи ерша, щетки, ватно-марлевого тампона — 0,5 минут на изделие (при ручной обработке);
3. Ополаскивание под проточной водой до исчезновения щелочности — от 5 до 10 минут;
4. Ополаскивание (обессоливание) в дистиллированной воде из расчета: на 2 набора инструментов — 1 литр дистиллированной воды;
5. Сушка горячим воздухом при температуре 85-90°.
Предстерилизационную очистку проводят ручным или механизированным способом (с помощью специального оборудования, например, ультразвуковых установок отечественного — «Серьга», «Кристалл-5», «УЗВ», «Ультраэст», «УВ-1», «УЗУМИ-15» — или импортного производства). Воздействие ультразвуковых колебаний значительно ускоряет отслаивание и разрушение загрязнений на поверхности изделий. Вышеуказанные установки различаются не только по рабочей частоте ультразвуковых генераторов (33 кГц и 44 кГц), но и по объему и конфигурации рабочих ванн. Установка «Кристалл-2,5» предназначена только для обработки стоматологического инструментария. Установки «Кристалл-15» и «УЗУМИ-15», имеющие ванны объемом 15 литров, предназначены для предстерилизационной очистки различных типов изделий. Фирмой «Галион» создана вакуумная установка «УВГ10-50» для предстерилизационной очистки изделий с труднодоступными каналами и полостями. Для обработки стоматологического инструментария фирма «Геософт Дент» выпускает настольную установку «ULTRAEST-М».
При использовании ручного способа применяют емкости из пластмасс, стекла или покрытые эмалью (без видимых повреждений эмали).

Предстерилизационная очистка ручным способом может осуществляться с применением замачивания в моющем растворе или с применением кипячения в растворе моющего средства.


Механизированный способ осуществляется согласно инструкции по эксплуатации, прилагаемой к конкретному оборудованию.
При наличии у средства, наряду с моющими, также и антимикробных свойств предстерилизационная очистка изделий на этапе замачивания или кипячения в растворе может быть совмещена с дезинфекцией в соответствии с таблицей, представленной ниже.

Предстерилизационная очистка и дезинфекция, совмещенные в одном процессе:



Разъемные изделия подвергаются предстерилизационной очистке в разобранном виде.
Изделия замачивают в моющем растворе при полном погружении с обязательным заполнением каналов и полостей на время от 15 до 60 минут в зависимости от свойств моющих средств.
Мойку изделий осуществляют с помощью ватно-марлевого тампона, тканевых салфеток, ершиков в том же растворе в течение 0,5-1 минуты. Каналы и полости изделий промывают с помощью шприца. Применение ершиков при очистке резиновых изделий не допускается.
Для предстерилизационной очистки растворы средств «Биолот», «Биолот-1», «Лизетол АФ», «Бланизол», «Пероксимед», «Септодор», «Векс-Сайд», а также средство «Гротанат», «Борербад», католиты и анолиты используются однократно. Растворы средств «Луч», «Зифа», «Дюльбак ДТБ/Л» («Дюльбак Макси») применяют двукратно. Растворы остальных средств допускается использовать до загрязнения (появление первых признаков изменения внешнего вида), но не более чем в течение времени, указанного в методическом документе по применению конкретного средства. При применении растворов, содержащих перекись водорода и моющее синтетическое средство, а также 2 и 3% растворы бикарбоната натрия или 1,5% раствор CMC «Лотос», могут использоваться до 6 раз в течение рабочей смены. Электрохимически активированные растворы католитов и анолитов, растворы «Биолота», «Лизетола АФ», «Пероксимеда», «Септодора», «Аист-универсал М» используют однократно. При использовании для очистки методов кипячения в растворах бикарбоната натрия и синтетических моющих средств (за исключением раствора CMC «Аист-универсал М»)
механическая очистка изделий с помощью ватно-марлевого тампона, тканевой салфетки или ерша проводится при ополаскивании изделий под проточной водой. Для снижения коррозии металлических инструментов в моющий раствор необходимо вводить олеат натрия в количестве 1,4 г на 1 литр раствора. Предстерилизационная очистка изделий ручным способом является трудоемкой процедурой, занимающей до 1/3 рабочего времени медицинской сестры. Ручной способ очистки контаминированных предметов сопряжен с риском инфицирования персонала возбудителями, передающимися через кровь, биологические жидкости и другими потенциально опасными микроорганизмами, в связи с чем этот способ не должен применяться.
Альтернативными ручной предстерилизационной очистке способами являются ультразвуковая обработка, применение моечных машин, моечно-дезинфекционных и моечно-стерилизационных установок. Для механизированного способа предстерилизационной очистки предложены различные типы моечных машин. Они могут быть однокамерными или многокамерными. Цикл обработки должен включать этапы: замачивание, мойку, ополаскивание водопроводной водой, ополаскивание дистиллированной водой и сушку. В однокамерных моечных автоматах все этапы обработки выполняются поочередно в одной и той же камере. В многокамерных машинах каждый этап обработки происходит в разных камерах.
Машинная мойка изделий предпочтительнее ручной вследствие ограничения контакта персонала с инфицированным материалом и возможности обеспечения более качественной очистки. Разрешение МЗ РФ на применение имеют моечные машины «Deko-25», «Deko-260», «Deko-2000» (фирма «Franke»), предназначенные, в зависимости от мощности, для мойки инструментария (в т.ч. стоматологического), наркозной и эндоскопической аппаратуры, лабораторной посуды и т.д., в которых в качестве моющего средства может быть использован финский препарат «Эридеко-11» фирмы «Эрисан». В настоящее время существует и ряд других средств, позволяющих, как отмечалось, дезинфекцию и предстерилизационную очистку объединить в один этап обработки. Это «Аламинол», «Дезэффект», «Деконекс Денталь ББ», «Вир-кон», «Гротанат», «Септабик», «Делансин», «Септодор-Форте», «Мистраль», «Авансепт», «Трилокс». Использование этих средств позволяет сделать процесс обработки инструментов менее трудоемким и сократить время их пребывания в растворах химических средств, хотя в последние годы, по данным зарубежных публикаций и российских авторов, приоритет следует сохранять за раздельным процессом дезинфекции и предстерилизационной очистки критичных средств (контактирующих со стерильными тканями или сосудистой системой) по причине снижения качества предстерилизационной очистки за счет выраженной фиксации остатков биологических загрязнителей на объектах. В таком случае такие «пары препаратов», как «Эринокс» и «Эригид форте» (фирма «Эрисан») позволят получить высокую степень антисептической подготовки техники. Режимы дезинфекции указанными средствами представлены в таблице 1 (по Г. Гвелесиани, 1999).

Контроль качества предстерилизационной очистки

Для определения качества предстерилизационной очистки медицинских изделий применяют следующие пробы:
1. Азопирамовая проба используется для наличия остаточных загрязнений кровью.
2. Исходный раствор азопирама готовят путем смешивания 100 г амидопирина и 1 г солянокислого анилина и доведением до объема 1 л 95% этилового спирта. Смесь перемешивают до растворения составных компонентов. Приготовленный раствор азопирама хранится в плотно закрытом флаконе в темноте. Срок хранения при комнатной температуре — не более 1 месяца, при содержании раствора в холодильнике — 2 месяца.
3. Постановку пробы проводят реактивом азопирам, который готовят путем смешивания равных количеств исходного раствора азопирама и 3% раствора перикиси водорода. Реактив азопирам хранится не более 2 часов. Реактив не следует размещать вблизи нагревательных приборов и на ярком свету. Постановку пробы необходимо проводить на холодных инструментах.
4. Нанесении 2 капель реактива на медицинское изделие или при протирании его марлевой салфеткой на загрязненных кровью изделиях появляется фиолетовое, затем быстро переходящее в розово-сиреневое окрашивание реактива. Проба выявляет кроме кровяных загрязнений наличие на изделиях пероксидаз растительного происхождения, окислителей и компонентов коррозии (солей железа и окислов). При выявлении наличия коррозии отмечается бурое окрашивание реактива. В остальных случаях выявляется розовато-сиреневое окрашивание.
5. Амидопириновая проба также применяется для выявления наличия остаточных количеств крови.
6. Для проведения пробы смешивают равные количества 5% спиртового раствора амидопирина, 30% раствора уксусной кислоты и 3% раствора перекиси водорода. 2 капли приготовленной смеси наносят на сухую поверхность медицинского изделия. Остаточное количество крови на поверхности инструментов проявляется сине-фиолетовым окрашиванием. Не следует проводить пробу на горячих инструментах.
7. Фенолфталеиновая проба применяется для определения наличия остаточных количеств моющих средств.
8. Пробу осуществляют путем нанесения на сухую, негорячую поверхность 2 капель 1 % раствора фенолфталеина. При наличии на поверхности изделий остатков моющих средств отмечается розовое окрашивание.
При выявлении положительной пробы на кровь или моющее средство на поверхности медицинских изделий, изделия обрабатываются повторно до получения отрицательной пробы. Результаты контроля фиксируются в журнале учета качества предстерилизационной обработки.

Упаковка и укладка изделий медицинского назначения

Упаковка — это один из пяти базовых этапов общего процесса стерилизации: очистка, дезинфекция, подготовка и упаковка, стерилизация, хранение и отпуск, использование. Эффективность процесса стерилизации зависит от типа используемого упаковочного материала, метода упаковки и загрузки изделий подлежащих стерилизации. Упаковка — это этап в общем процессе стерилизации, который следует за очисткой, дезинфекцией и подготовкой к загрузке изделий подлежащих стерилизации. Выбор и использование подходящего упаковочного материала — один из наиболее важных аспектов для эффективной стерилизации поддержания хранения.
Требования к упаковочному материалу: должен соответствовать используемому методу стерилизации; позволять воздуху и стерилянту проникать внутрь; поддерживать стерильность во время хранения и обращения; не иметь повреждений;
быть прочным, чтобы выдерживать разрывы и проколы; не расслаиваться при открытии; обеспечивать возможность нанесения маркировки; не выделять органических веществ;
быть достаточно гибким для быстрого сворачивания и разворачивания; быть недорогим; иметь гарантию качества; должен легко подвергаться утилизации. Выделяют стерилизационные упаковочные материалы, предназначенные для защиты простерилизованных изделий от вторичной контаминации микроорганизмами в пределах максимально допустимого срока, и защитную упаковку, предназначенную для защиты простерилизованных упаковок с медицинскими изделиями от воздействия факторов внешней среды во время их транспортирования и хранения до использования изделий по назначению.
Наиболее часто в качестве упаковочных материалов используется муслин (140 сечений нитей в 1 см), крафт-бумага, нетканые оберточные материалы и бумажные/пластиковые пакеты. При использовании однослойных стерильных пакетов их содержимое может контаминироваться от наружной поверхности упаковки при открытии. В связи с зтим предметы, подвергающиеся стерилизации, необходимо упаковывать в двухслойную бумагу или нетканые оберточные материалы. Исследованиями последних десятилетий установлено, что применяемые для стерилизации комбинированные и бумажные упаковочные материалы отвечают современным требованиям стерилизации. Необходимо свести к минимуму использование для стерилизации медицинских изделий стерилизационных коробок (биксов). Применение их допустимо лишь в крайних случаях после оборудования внутренним защитным поясом из текстильных материалов. Не следует применять для упаковки резиновую клейкую ленту, булавки, скобки, скрепки и другие острые предметы, которые могут повредить упаковку и стать причиной повреждения стерилизационного оборудования. Как показали результаты бактериологических исследований, высеваемость микрофлоры из биксов составила 3,8%, из крафт-пакетов — 1,08%, в бумажных и комбинированных пакетах фирм «Випак Медикал» и «SPS/Rexam» изделия были абсолютно стерильными. Высокая высеваемость микрофлоры с изделий, подвергшихся стерилизации в крафт-пакетах кустарного производства, вероятно, происходит из-за того, что в паровых стерилизаторах с вакуумной откачкой воздуха они часто расклеиваются. В последние годы широкое применение для стерилизации получили самозапечатывающиеся и термосвариваемые пакеты.
Самозапечатывающиеся стерилизационные пакеты изготавливаются из специальной медицинской бумаги Kraft и прозрачной полипропиленополиэфирной ламинированной пленки толщиной 2 мм. Пленка должна быть слегка окрашенной, чтобы оттенок позволял лучше видеть находящийся внутри инструмент. Предпочтительная конструкция пакета — это боковые и торцевые склейки-швы с самоклеящейся лентой, которая может прилипать как к бумаге, так и к пленке, т.е. 50% бумаги, 50% пленки и перфорированный сгиб. Существует простой способ проверки качества используемых пакетов. Запечатывается пустой пакет. Затем вскрывается угловая верхняя перфорированная склейка-шов так, чтобы можно было внутрь налить воду на половину объема. Если выявляется подтекание воды, то у самозапечатывающихся стерилизационных пакетов некачественная склейка. Важно помнить, что открывание пакета после стерилизации инструмента осуществляется снизу. Предпочтительнее наличие выреза для захвата рукой бумаги и пленки при открывании. Правильная процедура вынимания содержимого пакета заключается в отделении пленки от бумаги, а не в выталкивании инструмента через пленку и бумагу, так как в этом случае нарушается стерильность. Важно, чтобы при открывании пакета пленка отделялась от бумаги. Если хоть малейшая часть пленки останется на бумаге, то содержимое пакета считается загрязненным и подлежит повторной стерилизации. Пленка, оставшаяся на бумаге, подвергалась воздействию окружающей среды. Как только содержимое пакета при открывании войдет в контакт с пленкой, произойдет загрязнение содержимого материала. Полное отделение пленки от бумаги является обязательным. В противном случае качество используемых пакетов является сомнительным. Размер пакета так же важен для качества стерилизации. Если пакет слишком маленький или слишком плотно заполнен, то не представляется возможным заклеить его как следует. Любая неровность в месте склейки приведет к формированию отверстия и нарушению качества стерилизации. Термосвариваемая упаковка для стерилизации представлена на примере продукции фирмы «МЕДТЕСТ-СПб»:
комбинированные термосвариваемые пакеты, предназначенные для упаковывания медицинских изделий, стерилизуемых паровым методом; рулонный термосвариваемый материал для упаковывания медицинских изделий, стерилизуемых воздушным методом. Комбинированные стерилизационные упаковки изготовлены из специальной многослойной пленки голубого или зеленого цвета и медицинской бумаги, соединенных термошвом.
Рулонный термосвариваемый материал изготовлен из специальной бесцветной термостойкой пленки.
Защитная упаковка представлена пакетами, изготовленными из специальных сортов полимерной пленки.
Каждая упаковка (пакет) для паровой стерилизации содержит маркировку: химический индикатор процесса с буквенным обозначением цвета (серый) конечного состояния; товарный знак производителя; символ или буквенное обозначение направления вскрытия; цифровое обозначение номера партии, даты изготовления; обозначение кода типоразмера; символ или буквенное обозначение парового метода стерилизации.
Маркировка рулонного материала для воздушной стерилизации содержит: товарный знак производителя; символ или буквенное обозначение воздушного метода стерилизации; обозначение номера партии, даты изготовления; обозначение кода типоразмера. При использовании рулонного материала для воздушной стерилизации из него готовят пакеты, нарезая отрезки рукова необходимой длины. Размер отрезка подбирают с запасом не менее 3-4 см для нижнего и верхнего шва термосваривания. Термошвы запаивают таким образом, чтобы за швом оставалось еще 2-3 см пленки рукавного отрезка. Края рукавов никогда не должны обрезаться, т.к. в этом случае пленка может заворачиваться, создавая полости для накопления пыли. Каждая потребительская единица (пакет) защитной упаковки для транспортирования и хранения простерилизованных упаковок с медицинскими изделиями содержит маркировку: товарный знак производителя; обозначение кода типоразмера; обозначение номера партии, даты изготовления; символ или буквенное обозначение функционального назначения.
Размещают стерилизуемые изделия в упаковке, ориентируя изделие рабочей частью в сторону, противоположенную символу вскрытия. Для предотвращения повреждения стерилизационных упаковок колющими (иглы и др.) и режущими инструментами необходимо предварительно обернуть рабочие части режущих инструментов марлевыми или бумажными салфетками или упаковать изделия последовательно в две стерилизационные упаковки, соблюдая непременное правило: «бумага к бумаге», «пленка к пленке». Тканный операционный и перевязочный материал укладывают без уплотнения для обеспечения свободного проникновения пара между слоями. Запечатывание упаковок проводят с помощью термосварочных приборов, обеспечивающих ширину термошва не менее 8 мм. Температурный режим термосваривания составляет: для комбинированных пакетов, стерилизуемых паром: +180 … + 195°С; для рулонного материала, стерилизуемого горячим воздухом: +195 … +205°С. Оптимальные температурные условия термосваривания подбираются практическим путем регулировки температуры термосваривания, усилия термоваликов в соответствии с руководством по эксплуатации для конкретного термосваривающего прибора.
Контроль параметров режимов и условий стерилизации осуществляется с помощью химических индикаторов, размещенных как снаружи, так и внутри стерилизационной упаковки.
Простерилизованные изделия в упаковках после выгрузки из стерилизатора должны оставаться в стерильной зоне до их полного самоохлаждения. Во время самоохлаждения должны быть исключены: появление в стерильной зоне сквозняков, доступ холодного воздуха, присутствие посторонних лиц. Остывшие упаковки подлежат обязательному визуальному контролю. Поврежденные, влажные, упавшие на пол упаковки считаются загрязненными, а изделия из них подлежат обязательной переупаковке и повторной стерилизации. Повышение надежности регламентного срока хранения (до 90 дней) достигается хранением упаковок во вторичной (защитной) упаковке. Запечатывание защитных упаковок проводят с помощью самоклеющейся ленты шириной не менее 12 см или с помощью термосварочных аппаратов, обеспечивающих ширину шва не менее 8 мм. По окончании запечатывания в защитную упаковку маркируют с указанием даты стерилизации, наименования отделения. При комплектовании наборов инструментов перед упаковкой необходимо следить за тем, чтобы нержавеющие инструменты не соприкасались с инструментами, которые имеют повреждение хромового или никелевого слоев. Такие инструменты не должны использоваться во избежание развития коррозии инструментов, не имеющих коррозии. Упакованные инструменты укладываются в стерилизационные контейнеры на ребро, чтобы образующийся конденсат не скапливался в упаковках. Если наборы инструментов упакованы в картонные лотки, то они могут укладываться горизонтально, так как конденсат легко поглощается картоном или тканевой оберткой. Почкообразные лотки при стерилизации укладываются на ребро или дном вверх для предотвращения конденсатообразования.
Стеклянные изделия, бутылки, чашки, флаконы упаковываются в одноразовые упаковки — бумажные листы или пакеты отверстием вниз. Размер пакетов подбирается так, чтобы между материалом и краем с термошвом оставался промежуток не менее 3 см. Стерилизуемый материал не должен занимать более 3/4 объема упаковки, чтобы швы пакета не были напряжены. Перед запечатыванием пакета необходимо выдавить воздух, чтобы избежать высокого давления и разрыва запечатанных швов.
Сложенное операционное белье укладывается в бумажные упаковки, биксы или стерилизационные корзины вертикально, чтобы пар мог равномерно проходить между его слоями. Плотность упаковки должна быть такой, чтобы между уложенными слоями белья свободно могла проходить кисть руки. Для предотвращения контаминации простерилизованных изделий пользуются дополнительными защитными упаковками, например, текстильными мешками, пластиковыми чехлами, особенно при транспортировке на значительные расстояния. Наиболее эффективным является помещение упаковок, подлежащих стерилизации, предварительно в защитную упаковку с последующей стерилизацией одновременно всего комплекса упаковок. Хранение стерильных материалов осуществляется в закрытых шкафах. Стерильные упаковки укладываются в один слой, чтобы они не сминались и деформировались, т.к. это может проводить к разгерметизации. Следует избегать даже кратковременного хранения стерильных упаковок на полу, подоконниках, рядом с раковинами для мытья рук, вблизи незащищенных водопроводных труб, т.к. попадание влаги на упаковку увеличивает риск ре-инфицирования материалов. На каждой упаковке должна быть маркировка с указанием даты стерилизации или срока использования изделия. Сроки хранения стерильных изделий определяются действующими инструктивно-методическими документами.
В последние годы для хранения простерилизованного инструментария используются «ультрафиолетовые шкафы» отечественного и импортного производства для увеличения сроков хранения и удобства использования.

Источник: Особенности дезинфекции и стерилизации в амбулаторной стоматологии, Мороз Б.Т., Мироненко О.В. 2008г.

Обработка изделий медицинского назначения с использованием моющего средства «Биолот»

Цель: удаление белковых, жировых, механических загрязнений, остатков лекарственных средств, для повышения эффективности стерильности.

Показания: контакт изделий со стерильными тканями, органами или сосудистой системой, контактирование с раневой поверхностью, кровью, слизистыми оболочками и лекарственными средствами.

Оснащения и условия: вентилируемое помещение, емкости с плотно закрывающимися крышками, водный термометр, мерные емкости или дозаторы, обогревательные приборы, перчатки, лотки, «моющие комплексы», ватно – марлевые тампоны, ерши, медицинский инструментарий.

Этапы Обоснование
1. Надеть защитную одежду. Сохранение здоровья персонала.
2.Прготовить «моющий комплекс»: · Вода питьевая 995мл, 40-450С. · Биолот» — 5г; Обеспечение режима.
2. С помощью водяного термометра проверить температуру «моющего» комплекса, она должна быть 40-450С. Обеспечение режима.
3. Полностью погрузить в емкость с моющим раствором изделия медицинского назначения после дезинфекции и ополаскивания их проточной водой и закрыть крышкой. Примечание: замачивать колющие и режущие инструменты в отдельных емкостях. Внутренние каналы игл, трубчатых изделий заполнить «моющим комплексом» с помощью шприца или резинового баллончика. Обеспечение полного контакта инструментария с моющим раствором.
4.Выдержать изделия в моющем растворе 15 минут. Обеспечение режима.
5. С помощью ватно-марлевых тампонов, щеток или ершей промыть каждое изделие в течение 30 сек. и поместить на сетку. Удаление загрязнений из мест соединения на инструментах, из просветов, полостей, зазоров.
6.Промыть каждое изделие под проточной водой в течение 3 минут. Удаление остатков моющих средств с поверхности обрабатываемых изделий.
7.Ополоснуть каждое изделие в дистиллированной воде в течение 30сек. Обессоливание поверхности изделий и предупреждение повреждения тканей.
8.Поставить азопирамовую пробу. Контроль качества очистки.
9.Просушить изделия до полного исчезновения влаги (например, в воздушно-сушильных шкафах с открытой дверцей при t=75-87*C). Исключение условий, способствующих росту микроорганизмов (влажная среда). Предотвращение боя изделий из стекла в местах их соединения с металлом.


Примечание: моющий раствор с «Биолот» используется однократно

Совмещенная предстерилизационная очистка изделий медицинского назначения с использованием 2% раствора «Лизетол АФ».

Препарат «Лизетол АФ» является препаратом, совмещающим одновременно дезинфекцию и предстерилизационную очистку медицинских изделий.

Цель: удаление микроорганизмов (дезинфекция) медицинского инструментария; удаление белковых, жировых, механических загрязнений, остатков лекарственных средств, для повышения эффективности стерильности.

Показания: контакт изделий со стерильными тканями, органами или сосудистой системой, контактирование с раневой поверхностью, кровью, слизистыми оболочками и лекарственными средствами.

Оснащения и условия: вентилируемое помещение, емкости с плотно закрывающимися крышками, водный термометр, мерные емкости или дозаторы, обогревательные приборы, перчатки, лотки, «моющие комплексы», ватно – марлевые тампоны, ерши, медицинский инструментарий.

Этапы Обоснование
1. Надеть защитную одежду. Сохранение здоровья персонала.
2.Приготовить раствор по рецепту: · Препарат Лизетол АФ – 20мл; · Питьевая вода – 980мл. Обеспечение режима.
3. Полностью погрузить в емкость с моющим раствором изделия медицинского назначения после их использования и закрыть крышкой. Примечание: замачивать колющие и режущие инструменты в отдельных емкостях. Внутренние каналы игл, трубчатых изделий заполнить «моющим комплексом» с помощью шприца или резинового баллончика. Обеспечение полного контакта инструментария с моющим раствором.
4.Выдержать изделия в моющем растворе 60 минут. Обеспечение режима.
5. С помощью ватно-марлевых тампонов, щеток или ершей промыть каждое изделие в течение 1мин. и поместить на сетку. Удаление загрязнений из мест соединения на инструментах, из просветов, полостей, зазоров.
6.Промыть каждое изделие под проточной водой в течение 3 минут. Удаление остатков моющих средств с поверхности обрабатываемых изделий.
7.Ополоснуть каждое изделие в дистиллированной воде в течение 30сек. Обессоливание поверхности изделий и предупреждение повреждения тканей.
8.Просушить изделия до полного исчезновения влаги (например, в воздушно-сушильных шкафах с открытой дверцей при t=75-87*C). Исключение условий, способствующих росту микроорганизмов (влажная среда). Предотвращение боя изделий из стекла в местах их соединения с металлом.
Поставить азопирамовую пробу. Контроль качества очистки.
9. Упаковать изделия в зависимости от вида и режима стерилизации. Защита изделия от загрязнения и увеличение срока сохранения стерильности после стерилизации.

Примечание:сохранение активности раствора 7 суток.

Совмещенная предстерилизационная очистка изделий медицинского назначения с использованием 4% раствора «Лизетол АФ».

Препарат «Лизетол АФ» является препаратом, совмещающим одновременно дезинфекцию и предстерилизационную очистку медицинских изделий.

Цель: удаление микроорганизмов (дезинфекция) медицинского инструментария; удаление белковых, жировых, механических загрязнений, остатков лекарственных средств, для повышения эффективности стерильности.

Показания: контакт изделий со стерильными тканями, органами или сосудистой системой, контактирование с раневой поверхностью, кровью, слизистыми оболочками и лекарственными средствами.

Оснащения и условия: вентилируемое помещение, емкости с плотно закрывающимися крышками, водный термометр, мерные емкости или дозаторы, обогревательные приборы, перчатки, лотки, «моющие комплексы», ватно – марлевые тампоны, ерши, медицинский инструментарий.

Этапы Обоснование
1. Надеть защитную одежду. Сохранение здоровья персонала.
2.Приготовить раствор по рецепту: · Препарат Лизетол АФ – 40мл; · Питьевая вода – 960мл. Обеспечение режима.
3. Полностью погрузить в емкость с моющим раствором изделия медицинского назначения после их использования и закрыть крышкой. Примечание: замачивать колющие и режущие инструменты в отдельных емкостях. Внутренние каналы игл, трубчатых изделий заполнить «моющим комплексом» с помощью шприца или резинового баллончика. Обеспечение полного контакта инструментария с моющим раствором.
4.Выдержать изделия в моющем растворе 30 минут. Обеспечение режима.
5. С помощью ватно-марлевых тампонов, щеток или ершей промыть каждое изделие в течение 1мин. и поместить на сетку. Удаление загрязнений из мест соединения на инструментах, из просветов, полостей, зазоров.
6.Промыть каждое изделие под проточной водой в течение 3 минут. Удаление остатков моющих средств с поверхности обрабатываемых изделий.
7.Ополоснуть каждое изделие в дистиллированной воде в течение 30сек. Обессоливание поверхности изделий и предупреждение повреждения тканей.
8.Просушить изделия до полного исчезновения влаги (например, в воздушно-сушильных шкафах с открытой дверцей при t=75-87*C). Исключение условий, способствующих росту микроорганизмов (влажная среда). Предотвращение боя изделий из стекла в местах их соединения с металлом.
Поставиь азопирамовую пробу. Контроль качества очистки изделий.
9. Упаковать изделия в зависимости от вида и режима стерилизации. Защита изделия от загрязнения и увеличение срока сохранения стерильности после стерилизации.

Примечание:сохранение активности раствора 7 суток

Приготовление 5% раствора аламинола для дезинфекции изделий медицинского назначения по вирусной этиологии. (1 л)

Цель: использовать для дезинфекции согласно прика­зам по соблюдению санитарно-противоэпидемического ре­жима.

Оснащение: спецодежда, мерная ёмкость 50мл., емкость для воды с маркировкой до 1л,

концентрат «Аламинола», емкость для деинфицирующего раствора, деревянная лопатка.

Этапы Примечания
Подготовка к процедуре
1. Надеть спецодежду. Обеспечение безопасности на ра­бочем месте.
2. Подготовить оснащение, прове­рить маркировку. Соблюдение четкости в работе. Обеспечение личной ответственно­сти.
Выполнение процедуры
3.Взять емкость для воды, налить в неё 950мл. воды, вылить в емкость для дезинфицирующего раствора. Соблюдение методики приготовления раствора и процентной концентрации.
4. Налить в мерную емкость 50мл. концентрата «Аламинол». Соблюдение методики приготовления раствора и процентной концентрации.
5. Поместить 50мл. концентрата «аламинол» в емкость для дезинфицирующего раствора Соблюдение методики приготовле­ния растворов и процентной концен­трации.
6. Перемешать раствор деревянной лопаткой. Для получения однородного раствора.
7. Закрыть крышкой. Для соблюдения правил охраны труда. безопасности
8. Проверить маркировку емкости и бирки. Для контроля за сроком годности дезинфицирующего раствора.
9. Поставить дату приготовления раствора, роспись. Обеспечение преемственности в работе с дезинфицирующими растворами, личная ответственность, соблюдение сроков годности.
Завершение процедуры
10. Срок годности раствора 10 суток, при хранении в закрытых ёмкостях. Соблюдение методических рекомендаций.
11. Снять спецодежду, вымыть руки, вытереть насухо. Соблюдение личной гигиены меди­цинского работника.

Дезинфекция шприцов: иглу(не касаясь)погружаем в непрокалываемый контейнер желтого цвета, одноразового использования, с 5% рабочим раствором аламинола для дезинфекции и последующей утилизации;

погружаем в 5% рабочий раствор аламинола, шприц и поршень отдельно для заполнения полостей, экспозиция 60 минут. Вынимаем, укладываем в пакет желтого цвета ( отхода класса Б).

При повреждении кожных покровов (уколах, порезах) необходимо:

Этапы Обоснование
1. Приготовить аптечку при авариях Профилактика вирусных инфекций.
2. Вымыть руки, не снимая перчаток, проточной водой с мылом Удаление загрязнений с перчаток
3. Снять перчатки (сбросить в емкость с дезинфицирующим средством) Обеспечение инфекционной безопасности
4. Выдавить кровь из ранки Удаление микроорганизмов
5. Двух кратно обработать ранку 70% раствором спирта, экспозиция 10 минут; или 5% спиртовым раствором йода Соблюдение инфекционной безопасности
6. Заклеить ранку лейкопластырем Предохранение попадания в ранку загрязнений и микроорганизмов
7.При необходимости надеть новую пару перчаток (если необходимо продолжить процедуру) Соблюдение инфекционной безопасности
8.Зарегистрироать аварийную ситуацию в журнале учета аварийных ситуаций Необходимость регистрации несчастных случаев
9.Сообщить администрации (заполнить акт о несчастном случае на производстве). Необходимость регистрации несчастных случаев

Предстерилизационная очистка является вторым этапом обработки медицинских инструментов, которая проводится после дезинфекции и отмывки изделий от дезинфектанта, с целью окончательного удаления остатков белковых, жировых, механических загрязнений, лекарственных препаратов и т.д. От полноты и качества проведения предстерилизационной очистки непосредственно зависит эффективность последующей стерилизации, поэтому нормативами в практику введен обязательный контроль качества предстерилизационной очистки, осуществляемый как самим лечебно-профилактическим учреждением, так и специалистами Роспотребнадзора.

Средства для предстерилизационной очистки
Растворы, содержащие перекись водорода и моющее средство («Лотос», «Лотос-автомат», «Астра», «Прогресс», «Айна», «Маричка»), готовят в условиях ЛПУ, применяя перекись водорода медицинскую или техническую (марки А и Б). Для снижения коррозийного действия моющих растворов, содержащих перекись водорода с моющим средством «Лотос» или «Лотос-автомат», целесообразно использовать ингибитор коррозии 0,14% олеат натрия. Особенно важное значение имеет предстерилизационная очистка при применении «холодных» методов стерилизации: газовой, растворами химических веществ.

Этапы предстерилизационной очистки

  1. Замачивание изделий в моющем растворе на время определенное инструкцией к каждому конкретному раствору или кипячение в растворе (или использование механизированного метода с применением ультразвука);
  2. Мойка каждого изделия в моющем растворе при помощи ерша, щетки, ватно-марлевого тампона — 0,5 минут на изделие (при ручной обработке);

    3. Ополаскивание под проточной водой до исчезновения щелочности — от 5 до 10 минут;

    4. Ополаскивание (обессоливание) в дистиллированной воде из расчета: на 2 набора инструментов — 1 литр дистиллированной воды;

    5. Сушка горячим воздухом при температуре 85-90°

    Разъемные изделия подвергаются предстерилизационной очистке в разобранном виде.

    Изделия замачивают в моющем растворе при полном погружении с обязательным заполнением каналов и полостей на время от 15 до 60 минут в зависимости от свойств моющих средств.

    Мойку изделий осуществляют с помощью ватно-марлевого тампона, тканевых салфеток, ершиков в том же растворе в течение 0,5-1 минуты. Каналы и полости изделий промывают с помощью шприца. Применение ершиков при очистке резиновых изделий не допускается.

    Для предстерилизационной очистки растворы средств «Биолот», «Биолот-1», «Лизетол АФ», «Бланизол», «Пероксимед», «Септодор», «Векс-Сайд», а также средство «Гротанат», «Борербад», католиты и анолиты используются однократно. Растворы средств «Луч», «Зифа», «Дюльбак ДТБ/Л» («Дюльбак Макси») применяют двукратно. Растворы остальных средств допускается использовать до загрязнения (появление первых признаков изменения внешнего вида), но не более чем в течение времени, указанного в методическом документе по применению конкретного средства. При применении растворов, содержащих перекись водорода и моющее синтетическое средство, а также 2 и 3% растворы бикарбоната натрия или 1,5% раствор CMC «Лотос», могут использоваться до 6 раз в течение рабочей смены.

  3. Азопирамовая проба используется для наличия остаточных загрязнений кровью.
    . Исходный раствор азопирама готовят путем смешивания 100 г амидопирина и 1 г солянокислого анилина и доведением до объема 1 л 95% этилового спирта. Смесь перемешивают до растворения составных компонентов. Постановку пробы проводят реактивом азопирам, который готовят путем смешивания равных количеств исходного раствора азопирама и 3% раствора перикиси водорода. Постановку пробы необходимо проводить на холодных инструментах.
    Нанесении 2 капель реактива на медицинское изделие или при протирании его марлевой салфеткой на загрязненных кровью изделиях появляется фиолетовое, затем быстро переходящее в розово-сиреневое окрашивание реактива. Проба выявляет кроме кровяных загрязнений наличие на изделиях пероксидаз растительного происхождения, окислителей и компонентов коррозии (солей железа и окислов). При выявлении наличия коррозии отмечается бурое окрашивание реактива. В остальных случаях выявляется розовато-сиреневое окрашивание.

    2. Амидопириновая проба также применяется для выявления наличия остаточных количеств крови.
    . Для проведения пробы смешивают равные количества 5% спиртового раствора амидопирина, 30% раствора уксусной кислоты и 3% раствора перекиси водорода. 2 капли приготовленной смеси наносят на сухую поверхность медицинского изделия. Остаточное количество крови на поверхности инструментов проявляется сине-фиолетовым окрашиванием. Не следует проводить пробу на горячих инструментах.

    3. Фенолфталеиновая проба применяется для определения наличия остаточных количеств моющих средств.

    Пробу осуществляют путем нанесения на сухую, негорячую поверхность 2 капель 1 % раствора фенолфталеина. При наличии на поверхности изделий остатков моющих средств отмечается розовое окрашивание.
    При выявлении положительной пробы на кровь или моющее средство на поверхности медицинских изделий, изделия обрабатываются повторно до получения отрицательной пробы.

Предстерилизационная очистка

Предстерилизационная
очистка

Цель предстерилизационной очистки (ПСО)

удаление с изделий белковых, жировых и механических загрязнений, а также остатков лекарственных препаратов.

ПСО необходима, чтобы стерилизация проводилась эффективно. ПСО изделий медицинского назначения осуществляют после их дезинфекции и последующего отмывания остатков дезинфицирующих средств проточной питьевой водой.

Предстерилизационную очистку лигатурного шовного материала (нити хирургические шелковые крученые, нити хирургические капроновые крученые, шнуры хирургические полиэфирные) в ЛПУ не проводят.

Все новые инструменты должны пройти ПСО с целью удаления промышленной смазки и механических загрязнений.

Предстерилизационную очистку проводят ручным или механизированным (с помощью специального оборудования) способом.

Предстерилизационную очистку ручным способом осуществляют в соответствии с режимом, указанным в ОСТе , либо в методических указаниях по применению новых дезинфицирующих средств. При этом используют емкости из пластмасс, стекла или покрытых эмалью (без повреждений).

Методика проведения предстерилизационной очистки механизированным способом должна соответствовать инструкции по эксплуатации, прилагаемой к конкретному оборудованию.

Разъемные изделия подвергают предстерилизационной очистке в разобранном виде.

При замачивании или кипячении в моющем растворе изделия полностью погружают в раствор моющего средства, заполняя им каналы и полости изделий.

Метод предстерилизационной очистки, рекомендуемый ОСТом

1. этап — замачивание в моющем растворе при полном погружении. Первоначальная температура раствора 500С (не поддерживается). Экспозиция 15 минут.

2. этап — по окончании экспозиции осуществляют мойку изделий с помощью ерша, ватно-марлевых тампонов, тканевых салфеток; каналы изделий промывают с помощью шприца. Использование ерша при очистке резиновых изделий не допускается. Каждое изделие моют 0,5 минут.

3. этап – ополаскивание проточной водой не менее 10 минут.

4. этап — ополаскивание дистиллированной водой не менее 0,5 минут.

5. этап – сушка горячим воздухом (в сухожаровом шкафу) при температуре 850С до полного исчезновения влаги.

Приготовление моющего раствора

Компоненты:

1. СМС (синтетическое моющее средство) – 5 грамм

2. Раствор перекиси водорода –

3% — 170 мл

6% — 85 мл

пергидроль

27,5% — 17 мл

30% — 15 мл

32,5% — 14 мл

35% — 13 мл

37,5% — 13 мл

40% — 5 мл

3. Дистиллированная вода до 1литра.

Моющий раствор можно использовать в течение суток до 6 раз и далее до появления розового окрашивания.

Существуют методы, совмещающие этапы дезинфекции и предстерилизационной очистки инструментария.

Данные методы упрощают обработку, снижают количество используемых ёмкостей, сокращают время пребывания инструментов в растворе.

Первый метод

1. Кипячение инструментария в 1,5% растворе СМС (н-р «Лотос”) в течение 15 минут. Моющий раствор: 15 грамм СМС + дистиллированная вода до 1 литра.

2. Мойка изделий в растворе 0,5 минут.

3. Ополаскивание проточной водой не менее 10 минут.

4. Ополаскивание дистиллированной водой не менее 0,5 минут.

Второй метод

1. Кипячение инструментария в 2% растворе соды (20 грамм пищевой соды + дистиллированная вода до 1 литра) в течение 15 минут

2. Мойка изделий в растворе 0,5 минут.

3. Ополаскивание проточной водой не менее 5 минут.

4. Ополаскивание дистиллированной водой не менее 0,5 минут.

Если инструментарий загрязнён кровью или другими выделениями, то он должен быть предварительно отмыт. Промывные воды дезинфицируют при помощи сухих дезинфицирующих средств (200 грамм сухих дезинфицирующих средств на 1 литр промывных вод).

При использовании новых средств для предстерилизационнй обработки необходимо строго соблюдать инструкции, данные в методических указаниях по применению этих средств.

Приготовление моющего раствора для предстерилизационной очистки

Наименование компонентов

Количество компонентов для приготовления 1 дм’ мoющего раствора

Применение

CMC «Биолот» Вода,см3

3 997

Для механизирован­ной очистки (струй­ный метод, ершева-ние)

CMC «Биолот»,г Вода,см3

1, 998,5

При механизирован­ной очистке ротацион­ным методом

CMC’ «Биолот»,г Вода,см3

При ручной очистке

Р-р Н2О2 см3 С’МС’: » Прогресс» «Айна», «Астра», «Лотос»,г Вода.см3

5 978

При механизирован­ной (все методы) и ручной очистке

CMC «Лотос»,г Вода,см3

5 995

При использовании ультразвука

Механизированная очистка осуществляется струйным, ротационным методами и с применением ультразвука в спе­циальных моющих растворах, рекомендуемых ОСТ 42-21-2—85. Механизированный способ предстерилизационной очистки применяется в крупных централизованных стерилизационных отделениях (ЦСО). При проведении предстерилиза­ционной очистки персонал в обязательном порядке использу­ет средства защиты — резиновые перчатки, фартуки и т.д.

Методика и последовательность проведения предстери­лизационной очистки представлены в табл. 2.

Приготовление различных моющих растворов для пред­стерилизационной очистки описано в табл. 3.

Для предстерилизационной очистки допускается приме­нение медицинской перекиси водорода. Приведенные коли­чества перекиси водорода для приготовления моющего рас­твора рассчитаны для раствора с концентрацией 27,5%. При использовании коррозионно-нестойких металлических инстру­ментов последние после использования их в ходе операции или манипуляции, с последующей дезинфекцией, могут быть погружены в 1% раствор бензоната натрия (ингибитор кор­розии) при температуре 20 °С. Время экспозиции 60 мин. Пос­ле этого инструмент ополаскивается проточной водой в тече­ние 30 с. В случае необходимости инструмент может оста­ваться в растворе ингибитора коррозии до 7 ч.

Для контроля качества предстерилизационной очистки применяются две методики:

1. Контроль наличия остатков CMCпроизводится при помощи фенолфталеиновой пробы. На предмет наносится 1—2 капли 1% спиртового раствора фенолфталеина. Появле­ние розового окрашивания свидетельствует о наличии остат­ковCMC.

2. Контроль наличия остатков крови. Наиболее распрос­траненной является азопирамовая проба. Исследуемое изде­лие обрабатывается рабочим раствором (азопирам с 3% рас­твором перекиси водорода в соотношении 1:1). При наличии остатков крови появляется сиреневое окрашивание. Реже ис­пользуется бензидиновая проба: на предмет наносится 2—3 капли 1% раствора солянокислого бензидина и затем 2—3

капли 3%paствopaперекиси водорода. Появление сине-зеле­ного окрашивания свидетельствует о положительном резуль­тате.

При положительных результатах перечисленных проб инструментарий и материал должны вновь пройти полный цикл предстерилизационной обработки, а в некоторых случаях и дезинфекцию.

Стерилизация -полное освобождение какого-либо вещества или предмета от вегетативных форм и спор микро­организмов путем воздействия на них физических и химичес­ких факторов. В хирургии стерилизуют все предметы и изде­лия (аппараты, приборы, инструментарий, материал и т.д.), г соприкасающиеся в процессе их использования с раневой по­верхностью, слизистыми оболочками, биологическими жидкостями, и препараты, предназначенные для парентерально­го введения, а также препараты для перорального введения детям раннего возраста и т.д.

К применяемым для стерилизации методам и средствам предъявляются строгие требования. Они должны обладать высокой эффективностью и одновременно не повреждать сте­рилизуемых предметов и материалов. Существуют физичес­кие и химические методы стерилизации:

физические Химические:

-паровой, — газовый, — горячевоздушный, — растворами — радиационный, химических препаратов — инфракрасное, ультрафиолетовое излучение

Наибольшее применение в хирургической практике на-шли методы термической стерилизации — паровой и горяче­воздушный. Воздействие температуры свыше 56 °С приводит кденатурации белка живых организмов. При более высоких температурах происходит гибель или существенное наруше­ние жизнедеятельности многих микроорганизмов. Температура 120 °С убивает большинство микроорганизмов. При температуре 120 °С и выше погибают спорообразующие формы микроорганизмов.

Паровой метод стерилизации. Использование пара под

давлением является основным методом термической стерили­зации, применяемым на сегодняшний день в медицинской прак­тике. При этом стерилизующим агентом является водяной на­сыщенный пар под давлением от 0,5 до 2,0 кгс/см2и темпера­туре 110-132 °С при экспозиции 15-60 мин. Давление пара и температура находятся к корреляционной зависимости. Со­ответственно с достигаемой температурой изменяется и время экспозиции. Противомикробное действие этого метода обус­ловлено непосредственным воздействием на микробные клет­ки горячего пара при активном проникновении его между стерилизующимися объектами и внутрь капиллярно-порис­тых материалов. Недостатком парового метода является ув­лажнение стерилизуемых изделий при конденсации пара. Это может привести к коррозионным изменениям нестойких ме­таллов, и, кроме того, ухудшает условия хранения простерилизованных объектов, повышая возможность их вторичного обсеменения микробной флорой.

На практике используются два режима стерилизации:

РЕЖИМ I (Давление 2 кгс/см2, температура 132 °С, эк­спозиция 20 мин).

Применяется для стерилизации изделий из стекла, коррозионно-стойкого металла, текстильных изделий.

РЕЖИМ II (Давление 1,1 кгс/см2, температура 120 °С, экспозиция 45 мин).

Применяется для стерилизации изделий из тонкой рези­ны и пластмасс.

Все материалы, приготовленные для стерилизации дан­ным методом, предварительно упаковывают в пакеты из спе­циальной плотной бумаги, стерилизационные коробки (биксы), мешки из хлопчатобумажной ткани или другую специ­альную упаковку.

ВИДЫ УКЛАДКИ БИКСОВ:

1. Универсальная -в бикс помещается материал, предна­значенный для одной небольшой типичной операции (аппендэктомия, грыжесечение и т.д.).

2. Целенаправленная -в бикс закладывают необходимый набор инструментов, перевязочного материала и операцион­ного белья, предназначенного для конкретной операции

(пневмонэктомия, резекция желудка и т.д.).

3. Видовая -в бикс укладывается необходимый набор перевязочного материала или белья одного вида (бикс с хала­тами, бикс с салфетками и т.д.).

Перевязочный материал и операционное белье, подго­товленные к стерилизации, размещают в биксах в порядке, Принятом в данном лечебном учреждении. На дно бикса укла­дывают простыню, концы которой находятся снаружи. Пере­вязочный материал укладываю по секторам, неплотно, вертикально пачками или пакетами. Внутрь бикса помещают ин­дикаторы стерильности, края простыни заворачивают, крыш­ку бикса закрывают, оставляя открытыми отверстия для про­хождения пара. На крышке бикса прикрепляют бирку, на ко­торой указывается название материала, дата стерилизации, фамилия лица ее проводившего, и номер отделения.

Процесс стерилизации паром под давлением подразделяется на 4 периода:

— нагревание, — уравновешивание,

— уничтожение,

— охлаждение.

Период нагревания продолжается от момента включе­ния стерилизатора до достижения необходимого давления и температуры, согласно показаниям манометра, термометра.

Период уравновешивания — от момента достижения не­обходимой температуры до создания одинаковой температу­ры во всем стерилизуемом материале. Продолжительность это-го периода зависит от типа стерилизатора, вида и числа сте­рилизуемых изделий, режима стерилизации и определена ин­струкцией к используемому стерилизатору.

Период уничтожения — период гибели микроорганизмов вследствие воздействия горячего пара. Длительность его оп­ределяется по инструкции работы стерилизатора.

Период охлаждения продолжается от момента выключе­ния стерилизатора до снижения температуры и давления до уровня, позволяющего безопасно открыть его крышку. Обыч­но это 60 °С. При несоблюдении правил эксплуатации стери­лизатора относительно температурного режима, в периоде

охлаждения, в результате быстрого понижения температуры на стерилизуемом материале конденсируются капельки воды, что приводит к увлажнению белья. Влажное белье считается нестерильным!Сумма всех периодов стерилизации называет­ся стерилизационным циклом.

Горячевоздушный (сухожаровой) метод стерилизации -один из наиболее эффективных; Используется поток сухого горячего воздуха, при этом не происходит увлажнения стери­лизуемого материала, что является одним из его преимуществ. Однако он не лишен недостатков: сухой горячий воздух высу­шивает оболочку микробной клетки, тем самым повышая ее устойчивость к высоким температурам. Поэтому при исполь­зовании данного метода особенно важен контроль темпера­турного режима.

Применяются два режима горячевоздушной стерилиза­ции:

РЕЖИМ I: температура 180 °С при экспозиции 60 мин.

РЕЖИМ II: температура 160 °С при экспозиции 150 мин.

Горячевоздушный метод используется дня стерилизации термостойких материалов, в том числе предметов из коррозионно-нестойких металлов, стекла, фарфора, некоторых раз­новидностей термоустойчивой пластмассы (например сили­кона). Материалы и предметы, подлежащие стерилизации горячевоздушным методом, укладывают в биксы, металличес­кие контейнеры или пакеты из специальной бумаги. Нельзя подвергать стерилизации данным методом текстильные изде­лия из-за понижения их прочности или даже обугливания.

Весь рабочий цикл стерилизации продолжается 2—4 ч, в зависимости от типа стерилизационной камеры и количества стерилизуемого материала.

Последовательность работы воздушных стерилизаторов:

— загрузка материала при температуре 50—60 °С,

— нагревание,

— собственно стерилизация (от момента достижения до­лжной температуры до окончания времени экспозиции),

— охлаждение,

— разгрузка материала при температуре 20—30 °С.

Для контроля качества стерилизации паром под ­

давлением и горячевоздушным методом используют:

1. Бактериологический метод(взятие посевов). Применяется для ретроспективной оценки бактериальной стерильности, из-за длительности проведения методики (3—5 дней и бо­лее).

2. Технические методы (^периодическая проверка фун­кционирования термометров и манометров).

3. Термический контроль.Основан на свойстве ряда ве­ществ менять свой цвет и плавиться при строго определенной температуре.

Для контроля стерилизации паром под давлением ис­пользуются пробы с порошкообразными индикаторами, тем­пературная точка плавления которых выше 110 °С: антипи­рин (113 °С), антифибрин (115 °С), бензойная кислота (110—119 °С), мочевина (132 °С) и т.д.

Для контроля качества горячевоздушной стерилизации также используют пробы с порошкообразными индикатора­ми, температурная точка плавления которых 160 °С и выше: тиомочевина и сахароза (180 °С), янтарная кислота (180— 192 °С), пилокарпина гидрохлорид (200 °С), аскорбиновая кислота (187— 190 °С) и т.д.

Наиболее современным и достаточно эффективным ме­тодом контроля термических методов стерилизации является использование цветных индикаторных ленточек или полосок, пропитанных раствором специальных веществ, которые при достижении определенной температуры изменяют свой цвет.

Радиационный метод стерилизации.Метод основан на губительном воздействии различных видов ионизирующего излучения на микроорганизмы. Для стерилизации применя­ют: х-лучи, гамма-излучение, бета-частицы, нейтроны, протоны и другие виды ионизирующего излучения. Разница в вы­мываемых ими биологических изменениях почти незаметна. Гамма-лучи из всех видов излучений обладают наибольшей Проникающей способностью и поэтому используются чаще других. В качестве источников гамма-лучей применяют кобальт-60 и цезий-137. Бактерицидный эффект ионизирующе­го излучения является результатом воздействия наметаболические процессы в клетке. Каждый микроорганизм содержит

некоторое количество чувствительных «мишеней», разруше­ния одной из которых достаточно для нарушения жизнеспо­собности всего микроорганизма. Разрушение осуществляется путем возникновения возбуждения и распада молекул при воз­действии частиц ионизирующего излучения, что ведет к нару­шению хода обменных процессов, ферментативной деятель­ности клетки и образованию токсических аномальных про­дуктов обмена. При облучении прежде всего разрушается структура ДНК, в результате чего нарушается деятельность клеточного ядра. Важной особенностью ионизирующего из­лучения является то, что оно не вызывает немедленной гибели микробной клетки, хотя поражение является смертельным.

Стерилизующая доза ионизирующего излучения равна 2,5 Мрад. Этот вид стерилизации применяется в основном в медицинской промышленности для стерилизации одноразо­вых изделий в массовом количестве.

Метод стерилизации ультрафиолетовыми и инфракрас­ными лучами.Большое практическое значение имеет бактери­цидный эффект ультрафиолетовой радиации в пределах дли­ны волны 2000-4000 А. Максимум бактерицидного действия приходится на область 2540-2670 А. Бактерицидным действи­ем обладают только те лучи, которые абсорбируются протоп­лазмой. Механизм действия УФО близок к ионизирующему излучению, т.е. воздействие оказывается путем передачи до­полнительной энергии атомам, после чего последние перехо­дят в возбужденное состояние, при котором электроны могут оказаться выбитыми ю своей орбиты. Наиболее легко иони­зируются большие молекулы, по размерам равные молекуле протеина. Первоначальное действие заключается в том, что задерживается дыхание клетки и образование ДНК, в связи с чем наступает ее лизис. Основной реакцией, вероятно, являет­ся окисление сульфгидрильных групп, что вызывает инактивацию нуклеотидазы. Наибольшей устойчивостью к УФО об­ладают споры, т.к. их оболочка светонепроницаема. Дейст­вие УФО oгрaничивaeтcя только поверхностью облучаемого предмета, поэтому оно, несмотря на выраженный бактери­цидный эффект, используется в основном для дезинфекции воздуха помещений, а также для стерилизации некоторых

ин­струментов и материалов.

Инфракрасное излучение обладает более выраженным эффектом, чем УФО.

Газовый метод стерилизации.Стерилизация окисью эти­лена или смесью газов «ОБ» (окись этилена и бромистый ме­тил) производится в стационарном газовом стерилизаторе. Режим стерилизации зависит от характера стерилизуемого материала и определяется в соответствии с ОСТ 42-21-2—85 ,(табл. 4).

Таблица 4

Режимы стерилизации окисью этилена и смесью газов «ОБ»

Стерилизующий агент

Доза газа Т°С Экспо- Применяемость

мг кгс мм рт. зиция,

дм3см2ст. мин

Смесь газов «ОБ»(окись эти­лена с бромис­тым метилом в соотношении 1:25 повесу, соответственно)

2000 0,75 549 35 240 Оптика, кардио-стимуляторы

200 0,81 595 55 240 Полимерные материалы, резина, стекло, металл

2000 0,81 595 55 360 Пластмассовые магазины к сшивающим аппаратам

Окись этилена

Смесь газов «ОБ»

1200 0,68 498 не 960 Полимерные менее материалы, 18 стекло, металл

2000 0,70 510 не 960 Полимерные менее материалы, 18 стекло, металл

Примечание. Относительная влажность не менее 80%.

Стерилизация производится в упаковке из двухслойной полиэтиленовой пленки, пергамента, в мешочной пропитан­ной бумаге и мешочной влагопрочной бумаге. Изделия после предстерилизационной очистки высушивают и в разобран­ном виде упаковывают. По окончании стерилизации по дан­ной методике изделия можно использовать только после их выдержки в хорошо проветриваемом помещении при скорос­ти движения воздуха не менее 20 см/с в течение: 1 суток — для изделий из стекла и металла; 5-13 суток — для изделий и;

полимерных материалов (резины, пластмассы), имеющих крат­ковременный контакт с раневой поверхностью (до 30 мин); 14 суток — для всех изделий, имеющих длительный контакт (свы­ше 30 мин) со слизистыми оболочками, кровью, тканями че­ловеческого организма; 21 сутки — для изделий из полимерных материалов, имеющих длительный контакт (свыше 30 мин), при использовании в детской практике. После стерилизации материал в упаковке может сохранять свою стерильность от 1 года до 5 лет.

Метод стерилизации водными парами формальдегида(16% раствор). Подвергаются изделия из резины, стекла, полимер­ных материалов, металла. Изделия перед обработкой водны­ми парами формальдегида упаковывают в специальные паке­ты из полиэтилена или пергамента. Цикл стерилизации про­водится в параформалиновом стерилизаторе при температуре 75 °С и относительной влажности 96° в течение 300 мин. Для нейтрализации формалина применяется распыление 23-25° о раствора аммиака в количестве 90 см3в течение 60 мин. После стерилизации изделия в упаковке сохраняют свою стериль­ность в течение 5 лет.

Реже используется стерилизация сухими парами формаль­дегида. Цистоскопы, бронхоскопы, ларингоскопы и другие предметы размещают в подвешенном состоянии, либо на пол­ках в специальной камере с притертой крышкой. На дно ка­меры помещают таблетки формалина, обладающего большой способностью к испарению. Стерилизация происходит при температуре не менее 20 °С в течение 24 ч. Для поддержания низкой влажности в камеру помещают мешочек с кристалли­ческим хлоридом кальция. После стерилизации предметы или

приборы промывают стерильной дистиллированной водой.

Метод стерилизации растворами химических препаратов. Для химической стерилизации предметов из полимерных ма­териалов, резины и стекла, а также коррозионно-стойкого металла используют перекись водорода, соединения на осно­ве перекиси водорода, альдегиды. ОСТ 42-21-2 85 предус­матривает использование двух химических препаратов: пере­кись водорода (6% раствор) и дезоксон-1 (1% раствор). Сте­рилизация осуществляется в закрытых емкостях из стекла, пластмассы, а также эмалированной посуде при условии пол­ного погружения материала в раствор. При использовании 6% раствора перекиси водорода, при комнатной температуре, время экспозиции составляет 360 мин, при температуре 50 °С — 180 мин. Температура раствора в процессе стерилизации не поддерживается. 1% раствор дезоксон-1, при комнатной тем­пературе, стерилизует материал в течение 45 мин. Раствор перекиси водорода может быть использован в течение 7 суток со дня приготовления, а дезоксон-1 — в течение 24 ч. Повтор­ное использование растворов запрещено!

После стерилизацииматериал, перед его употреблением, дважды прополаскивают в стерильной дистиллированной воде. Стерилизация осуществляется в условиях, соответству­ющих требованиям к «чистым операционным». Первому? в виде 2,4-4,8% раствора может использоваться для стерилиза­ции различных изделий хирургического назначения (шовный материал, инструментарий, дренажные трубки и т.д.) и даже эндоскопической аппаратуры. Однако существующими нор­мативными актами его применение не оговорено.

Химическая стерилизация является наиболее оптималь­ной для обработки режущего инструментария, выполненного из коррозионно-стойкого металла.

Тема: «Технология предстерилизационной очистки, её значение» (стр. 4 )

• азопирамовая (на наличие крови, моющих средств, ржавчины, белковых веществ и т. д.);

• фенолфталеиновая (на загрязнение шприцев и других инструментов щелочными компонентами моющих средств).

Таблица 1. Контроль качества предстерилизационной очистки (реакции на кровь)

Азопирамовая проба.

Готовят 1-1,5% раствор солянокислого анилина в 95% растворе этилового спирта. В плотно закрытом флаконе при температуре 4 °С (в холодильнике) его можно хранить 2 мес, а в темноте при комнатной температуре (18-23 °С) не более 1 мес. Умеренное пожелтение реактива в процессе хранения без выделения осадка не снижает его рабочих качеств.

Раствор готовят непосредственно перед пробой (смешивают в равных количествах азопирам и 3% раствор перекиси водорода).

Рабочий раствор азопирама должен быть использован в течение 1-2 ч, иначе может появиться спонтанное розовое окрашивание. При температуре 25 °С раствор розовеет быстрее, поэтому его используют в течение 30-40 мин.

Нельзя подвергать проверке горячие инструменты, а также держать раствор при ярком свете, повышенной температуре (вблизи нагревательных приборов).

Проба с азопирамом по чувствительности не уступает отменённой бензидиновой пробе и в 10 раз превосходит амидопириновую.

При азопирамовой пробе фиолетовое окрашивание в течение нескольких секунд переходит в розово-сиреневое или буроватое.

Фенолфталеиновая проба.

Готовят 1% спиртовой раствор фенолфталеина, который хранят во флаконе с притёртой пробкой в холодильнике в течение 1 мес.

При положительной пробе на кровь жировое загрязнение или моющее средство всю группу контролируемых изделий подвергают повторной очистке (до получения отрицательных результатов). Алгоритм приведён в табл. 2. Контролю подвергают 1% каждого наименования изделий, обработанных за сутки, а в ЦСО — за одну смену.

Таблица 2. Алгоритм оценки качества предстерилизационной очистки (реакции на СМС и жиры)

Приложение 5

Тема: «Технология предстерилизационной очистки, её значение.»

1 вариант

Выберете один правильный ответ:

Температура моющего раствора при предстерилизационной очистки мед. инструментария (в градусах С):

а) 55-65

б) 45-50

в) 25-35

г) 18-20

2 .Для контроля качества предстерилизационной обработки на отмывку изделий от моющего раствора проводится:

а) фенолфталеиновая проба

б) азопирамовая проба

в) амидопириновая проба

3. Последовательность этапов обработки изделий мед. назначения:

а) сочетание дезинфекции с предстерилизационной очисткой

б) предстерилизационная очистка, дезинфекция.

в) дезинфекция, предстерилизационная очистка, стерилизация.

4. Объём перекиси водорода используемый для приготовления 1 литра моющего раствора:

а)перекись водорода 27,5% -14 мл.

б)перекись водорода 27,5% -15мл.

в) перекись водорода 27,5% -17мл.

5. Время выдержки изделий мед. назначения в моющем растворе:

а) 10 мин.

б) 15 мин.

в) 30 мин.

6.Положительная фенолфталеиновая проба указывает на то, что:

а) на инструментах осталась кровь

б) инструменты недостаточно отмыты от моющего раствора

в) стерилизация была недостаточна.

7. Для контроля качества предстерилизационной обработки изделий на остатки крови проводят пробу:

а) фенолфталеиновую

б) азопирамовую

в) с суданом

8. Положительная азопирамовая проба укажет на то, что:

а) инструменты загрязнены кровью

б) на инструментах остатки дезинфектантов

в) дезинфекция была недостаточна.

9.Для приготовления 1литра моющего раствора при предстерилизационной обработке инструментария необходимо взять 3% раствор перекиси водорода (в мл.):

а) 220

б) 200

в) 160

10. Приготовление 1 л. моющего раствора для предстерилизационной обработки инструментария:

а) 5г. любого порошка, 200 мл. 3% перекиси водорода довести до 1л. водой

б) 5 г. порошка «Лотос», 160 мл. 3% перекиси водорода, довести до 1л. водой

в) 10 г. любого порошка развести в 990 мл. воды

11. Концентрация перекиси водорода в приготовленном моющем растворе:

а) 5%

б) 3%

в) 1%

г) 0,5%

12. Экспозиция при замачивании медицинских инструментов в моющем растворе при предстерилизационной очистке:

а) 45

б) 30

в) 15

г) 10

13. Приготовление моющего 1,5% раствора:

а) 15г порошка довести водой до 1 л.

б) 10г порошка довести водой до 1,5л.

в) 5г порошка довести водой до 1л.

г) 1,5г порошка довести водой до 1л.

14. Положительная азопирамовая проба на скрытую кровь дает окрашивание:

а) зеленое

б) розовое

в) красное

г) фиолетовое (сине-фиолетовое)

15. Важный момент в предстерилизационной очистке:

а) промывание

б) экспозиция

в) механическая очистка от белковых остатков

г) ополаскивание

16. После проведения предстерилизационной очистке для промывания, мед. инструментария используется вода:

а) проточная

б) кипяченная

в) дистиллированная

17. Фенолфталеиновая проба проводится для определения остатков:

а) масляного раствора

б) крови

в) моющего средства

18.Моющий раствор с использованием средства «Лотос» применяется:

а) в течении суток до появления фиолетовой окраски, нагревается до 3 раз.

б) в течении суток до появления фиолетовой окраски

в) в течении суток до появления розовой окраски, нагревают до 6 раз

г) до появления розовой окраски

19. При положительной фенолфталеновой пробе появляется окрашивание:

а. сине-зеленое

б. фиолетовое

в. розовой до малинового

г. коричневой

Тема: «Технология предстерилизационной очистки, её значение.»

2 вариант

Выберете один правильный ответ:

1.Приготовление 1 л. моющего раствора для предстерилизационной обработки инструментария:

а) 5г. любого порошка, 200 мл. 3% перекиси водорода довести до 1л. водой

б) 5 г. порошка «Лотос», 160 мл. 3% перекиси водорода, довести до 1л. водой

в) 10 г. любого порошка развести в 990 мл. воды

2.Концентрация перекиси водорода в приготовленном моющем растворе:

а) 5%

б) 3%

в) 1%

г) 0,5%

3.Экспозиция при замачивании медицинских инструментов в моющем растворе при предстерилизационной очистке:

а) 45

б) 30

в) 15

г) 10

4.Приготовление моющего 1,5% раствора:

а) 15г порошка довести водой до 1 л.

б) 10г порошка довести водой до 1,5л.

в) 5г порошка довести водой до 1л.

г) 1,5г порошка довести водой до 1л.

5.Положительная азопирамовая проба на скрытую кровь дает окрашивание:

а) зеленое

б) розовое

в) красное

г) фиолетовое (сине-фиолетовое)

6.Важный момент в предстерилизационной очистке:

а) промывание

б) экспозиция

в) механическая очистка от белковых остатков

г) ополаскивание

7.После проведения предстерилизационной очистке для промывания, мед. инструментария используется вода:

а) проточная

б) кипяченная

в) дистиллированная

8.Фенолфталеиновая проба проводится для определения остатков:

а) масляного раствора

б) крови

в) моющего средства

9.Моющий раствор с использованием средства «Лотос» применяется:

а) в течении суток до появления фиолетовой окраски, нагревается до 3 раз.

б) в течении суток до появления фиолетовой окраски

в) в течении суток до появления розовой окраски, нагревают до 6 раз

г) до появления розовой окраски

10. При положительной фенолфталеновой пробе появляется окрашивание:

а) сине-зеленое

б) фиолетовое

в) розовой до малинового

г) коричневой

11.Температура моющего раствора при предстерилизационной очистки мед. инструментария (в градусах С):

а) 55-65

б) 45-50

в) 25-35

г) 18-20

12 .Для контроля качества предстерилизационной обработки на отмывку изделий от моющего раствора проводится:

а) фенолфталеиновая проба

б) азопирамовая проба

в) амидопириновая проба

13.Последовательность этапов обработки изделий мед. назначения:

а) сочетание дезинфекции с предстерилизационной очисткой

б) предстерилизационная очистка ,дезинфекция.

в) дезинфекция, предстерилизационная очистка, стерилизация.

14.Объём перекиси водорода используемый для приготовления 1 литра моющего раствора:

а)перекись водорода 27,5% -14 мл.

б)перекись водорода 27,5% -15мл.

в) перекись водорода 27,5% -17мл.

15.Время выдержки изделий мед. назначения в моющем растворе:

а) 10 мин.

б) 15 мин.

в) 30 мин.

16.Положительная фенолфталеиновая проба указывает на то, что:

а) на инструментах осталась кровь

б) инструменты недостаточно отмыты от моющего раствора

в) стерилизация была недостаточна.

17. Для контроля качества предстерилизационной обработки изделий на остатки крови проводят пробу:

а) фенолфталеиновую

б) азопирамовую

в) с суданом

18. Положительная азопирамовая проба укажет на то, что:

а) инструменты загрязнены кровью

б) на инструментах остатки дезинфектантов

в) дезинфекция была недостаточна.

19.Для приготовления 1литра моющего раствора при предстерилизационной обработке инструментария необходимо взять 3% раствор перекиси водорода (в мл.):

Добавить комментарий

Ваш e-mail не будет опубликован. Обязательные поля помечены *